磁珠法全血提取过程应注意哪些问题
发布时间:
2023-10-17 10:52
实验室提取全血核酸,不同人操作,会有不同的结果,得率或高或低,洗脱或浑浊或发黄等等,会遇到各种各样的问题,下面对其中的常见问题进行了总结,仅供参考。
1、样本处理
如是-20°C冷冻保存的样本,有实验安排时提前拿出血样,解冻至室温,过冷或结块会影响裂解效果。
2、裂解结合
在裂解过程中,要按照说明书上进行操作,不同的上样量对应不同的试剂体系,上样量过多过少都会影响裂解的效果。以雷火竞技开发的全血基因组DNA提取试剂(磁珠法)为例,上样量为200ul,配合的裂解液用量为400ul,这样的搭配为最佳。无论是手工操作还是上机,不可避免有人为因素,加样过程中就要统一动作、快速并准确加样,以此减少误差。由于有些客户的实验,需要高产量,他们就会惯性的认为,等比例加大试剂就可以。其实是不是这样的,在实际操作中,不能简单的放大裂解体系,需要根据裂解液对样品裂解效率进行优化,将上样体积浓缩后,才可进行磁珠法操作流程的优化。
3、洗涤
样本经过裂解之后,在洗涤过程中,磁珠结团是经常遇到的现象,尤其手工操作时,这是由磁珠本身特性和磁珠所处试剂环境两方面造成的,有些磁珠不仅在全血DNA提取过程中会结团,其他的样本也同样会结团,其实结团现象可以用来提前预判实验结果,结团往往是吸附了大量核酸,如果哪次实验没有结团,本次的实验结果或许会不太好,不过也不能一概而论,杂质太多也是引起磁珠结团的原因。通过修改试剂配方,优化试剂用量,可以改善磁珠的结团现象,这就需要对各种参数进行调整。
4、洗脱
得率是影响下游实验的最直接因素,根据我们的经验,200ul的全血,得率一般在10ug以上,但是有时实验的结果只有2ug左右,甚至更低,这样的结果可能是两方面导致的,第一是裂解,第二是洗脱。若是裂解过程的问题,可能是裂解不充分,在洗涤的时候上清液颜色会发黄、发红,这种情况下,可以提高裂解温度,或者增加裂解液使用量。洗脱环节的问题,经常表现为结团的磁珠未被打散,或有挂壁现象,磁珠有滞留,从而减少了核酸的含量,可考虑加大震荡力度,或用枪头吹吸解决。
【实验案例】
案例1:
同一批次试剂提取不同健康人新鲜血样的实验结果:
样本序号 |
样本 |
A260/A280 |
A260/A230 |
Conc.(ng/µL) |
1 |
1号血样 |
1.80 |
1.89 |
75.7 |
2 |
2号血样 |
1.89 |
1.89 |
73.9 |
3 |
3号血样 |
1.83 |
1.93 |
68.2 |
4 |
4号血样 |
1.82 |
1.90 |
67.9 |
5 |
5号血样 |
1.84 |
1.99 |
59.1 |
电泳图如下:
结果分析:试剂的提取效果很好(提取产物纯度好、浓度高、电泳条带完整)
案例2:
不同批次试剂提取同一猪血样本的实验结果:
试剂批号 |
A260/A280 |
A260/A230 |
Conc.(ng/µL) |
批次1 |
1.87 |
1.90 |
157.5 |
批次1 |
1.87 |
1.96 |
137.9 |
平均值 |
1.87 |
1.93 |
147.7 |
批次2 |
1.88 |
1.92 |
132.6 |
批次2 |
1.88 |
1.99 |
140.4 |
平均值 |
1.88 |
1.96 |
136.5 |
批次3 |
1.89 |
1.95 |
141.2 |
批次3 |
1.89 |
1.91 |
141.7 |
平均值 |
1.89 |
1.93 |
141.4 |
结果分析:由上图可以看出,提取试剂批次间差异小。
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